简单来说，就是将培养基中的血清（FBS）浓度降低到0-1%，帮助细胞从“自助餐”模式切换到“轻断食”状态。血清中含有大量生长因子，移除后，细胞会停留在G0/G1期，就像被按下了暂停键⏸️，后续处理将更加灵活！

1. 同步周期，告别细胞不同步影响

在饥饿处理12-24小时后，90%以上的细胞能够同步在G0/G1期，这样在测定CyclinD1、p27等周期蛋白时，结果将显得异常完美📈。

2. 激活凋亡与自噬

撤掉血清后，细胞会启动“自救模式”，Caspase-3水平飙升💥，LC3-II斑点显著增加，尤其在研究抗癌药物或自噬诱导剂时，模型将变得十分有利！

3. 提升转染效率

在细胞饥饿至“代谢较慢”的情况下，质粒和siRNA的转染效率显著提升。比如，经过一夜的饥饿，HEK293T细胞的转染效率跃升从30%至80%，甚至连难以处理的悬浮细胞也变得乖巧🤝。

4. 清零信号通路背景

血清中的生长因子会对信号通路产生影响。经过12小时的饥饿处理后，再用EGF或胰岛素刺激，p-ERK与p-AKT的灰度值对比会变得特别明显🔍。

5. 模拟体内微环境

在肿瘤或干细胞研究中，采用低浓度（0.5%）血清可以有效重现低营养或低氧等环境，癌细胞的糖酵解过程被激活，干细胞的干性得以维持🔥。

实验步骤

1️⃣ 预处理：当细胞生长到70-80%汇合时，用PBS轻柔洗涤2遍，以去掉残留的血清“余味”🚿。

2️⃣ 饥饿：更换为0-1%血清的培养基，贴壁细胞保持静置，悬浮细胞则降低转速以防沉淀🌀。

3️⃣ 唤醒：在实验前再加入正常血清，细胞将迅速恢复到“满血复活”的状态，后续转染或用药可实现无缝衔接⚡️。

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